Протока підшлункової залози проходить через її довжину і впадає в дванадцятипалу кишку в її низхідній частині на великому сосочку. Загальна жовчна протока звичайно зливається з панкреатичною і відкривається в кишку там же .

Рис.4.Дванадцятипала кишка і підшлункова залоза

Топографія

Головка проектується на хребет в діапазоні від XII грудного до IV поперекового хребців. Тіло розташовується на рівні від TXII до LIII; положення хвоста коливається від TXI до LII.

Мікроскопічна будова[12]

За будовою це складна альвеолярно-трубчаста . З поверхні орган покритий тонкою сполучнотканинною капсулою. Основна речовина розділена на часточки, між яких залягають сполучнотканинні тяжі, вивідні протоки, судини, нерви, а також нервові ганглії і пластинчасті тіла. Підшлункова залоза включає екзокринну і ендокринну частини.

Екзокринна частина підшлункової залози представлена розташованим в часточках панкреатичними ацинусами, а також деревовидною системою вивідних проток: вставними і внутрішньодольковими протоками, міжчасточковим протоками і нарешті загальною панкреатичною протокою, що відкривається в просвіт дванадцятипалої кишки.

Ацинус підшлункової залози є структурно-функціональною одиницею органу. За формою ацинуc є округлою освітою розміром 100—150 мкм, в своїй структурі містить секреторний відділ і вставну протоку, що дає початок всієї системі проток органу. Ацинуси складаються з двох видів клітин: секреторних — екзокринних панкреатоцитів, в кількості 8—12, і прострумових — епітеліоцитів. Ендокринна частина підшлункової залози утворена панкреатичними острівцями або острівцями лангерганца.

Острівці складаються з клітин – інсуліноцитів .серед яких за фізико хімічними та морфологічними типами гранул виділяють[ 12.]

Функції

Клітини екзокринної частини підшлункової залози заповнені секреторними гранулами, що містять попередники травних ферментів (головним чином , , і ), які секретуются в просвіт ацинуса. Це, так звані, зимогенні гранули, містять неактивні форми ферментів . Перетворення ферментів з неактивної форми є важливим чинником, перешкоджаючим энзимному пошкодженню підшлункової залози, часто спостерігається при панкреатитах. Підшлункова залоза є головним джерелом ферментів для переварення і . Основний панкреатичний секрет прострумових клітин містить іони бікарбонату і бере участь в нейтралізації кислого шлункового .

2.Матеріали і методи

2.1.Дослідження активності б-амилази (діастази)у сироватці крові амілокластичним методом.Методика.

Принцип методу заснований на колориметричному визначенні концентрації крохмалю після його ферментативного гідролізу.

Реактиви:

1. Розчин крохмалю — 2 г/100мл. 2,0г крохмалю (наприклад, для колориметрії) ретельно розтирають в ступці з невеликою кількістю (8-10 мл) води. Одержану суспензію тонким струменем вливають (при постійному помішуванні) в киплячу в посудині воду (близько 100 мл), доводять об'єм до 100 мл і кип'ятять ще декілька хвилин до отримання майже прозорого розчину. Після чого охолоджують реактив. Реактив може зберігатися в холодильнику протягом 5—7 днів.[5]

2. 0,1 моль\л фосфатного буфера, рН 7,2. Готують (бажано щоденно) шляхом змішування 72 мл 0,1 моль/л розчину Na2HP04 * 2Н20 (17,4 г/л) з 28 мл 0,1 моль/л розчину КН2Р04 (13,6г безводної солі розчиняють в 1 л води). Початкові суміші можуть зберігатися в холодильнику 10-15 днів.

Кристалогідрат Ма2НР04 * 2Н20 одержують з солі з великим змістом води кристалізації шляхом вивітрювання її при кімнатній температурі впродовж двох діб .

3. Розчин NaCl —3 г/100 мл.

4. 1н розчин НСl.

5. 0,1 н розчин йоду. 3,0г KI розчиняють в 25,0 мл дистильованої води, в яку вносять 1,27 г кристалічного йоду, після цього об’єм розчину доводять дистильованою водою до 100,0 мл. Розин зберігають в темній посудині протягом тривалого часу.

Хід визначення та умови проведення досліду:

В дві пробірки (дослідну і контрольну) вливають по 0,5 мл розчину крохмалю, 0,3 мл фосфатного буферу і 0,1 мл розчини NaCl. Після 10 хвилинного прогрівання суміші при 37°С в дослідну пробірку додають 0,1 мл сироватки (можна профільтровану мочу розведенні 1 : 10 або 1 : 100), вміст її добре перемішують і термостатують 30 хв при +37 °С. Інкубацию суміші переривають доливанням 0,1 мл розчину соляної кислоти (при цьому рН реактиву стає нижчим, що приводить до припинення дії амілази). Потім 0,2 мл вмісту пробірки переносять в 50-мілілітрову мірну колбу, в яку заздалегідь поміщають 40 мл води, 0,5 мл соляної кислоти, 0,1 мл розчину йоду, доводять об'єм реагентів дистильованою водою до мітки.

Контрольну пробу (для вимірювання початкової екстинкції крохмалю) опрацьовують так-же , як і дослідну, але соляну кислоту додають до інкубаційної суміші. Дослідну і контрольну проби фотометрують негайно ж на Spekol (довжина хвилі 600 нм) в кюветі з товщиною шару. При фотометруванні проб, як розчин для порівняння використовують дистильовану воду. В подальшому експеримент повторювався через 1 год.і спостерігалась подальша реакція.

До недавнього часу активність ферменту було прийнято виражати в амілазних (діастазних) одиницях на 100 мл сироватки (або сечі) при інкубації суміші протягом 30 мін. При цьому в способі оцінки ферментативної активності, розрахунок вели виходячи з того, що одна од. діастази (амілази) відповідає розщеплюванню 10 мг крохмалю. У зв'язку з цим активність діастази (амілази) визначали формулою:

А=Еконт.-Едосл.\ Еконт Ч1000

А-активність б-амілази

Еконт.-оптична густина контрольної проби

Едосл.-оптична густина дослідної проби

1000 — коефіцієнт перерахунку активності ферменту на 100 мл сироватки.

Примітки: 1. Для визначення активності а-амілази рекомендується досліджувати свіжу сироватку і сечу.

2. Інтенсивність забарвлення йодно-крохмального розчину, що міститься в колбі, обернено пропорційна коливанням температури. Тому треба стежити за тим, щоб в дослідна і контрольна проби під час кольорової реакції мали сталу температуру.

3.Результати досліду

В ході проведеного досліду нами було здобуто натупні результати які подальшому статистично опрацьовувалися за допомогою